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높다면 template와 잘 binding하지 않으므로 온도 설정에 주의가 필요하다.
7. 참고문헌
1) 생화학실험(2) 실험교본, 교육과학기술부의생명특성화사업단.
2) Jeremy M. Berg, John L. Tymoczko, Lubert Stryer. 2007, Biochemistry, sixth ed.
3) http://en.wikipedia.org/wiki/
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실험(2) 실험교본, 교육과학기술부의생명특성화사업단.
2) Jeremy M. Berg, John L. Tymoczko, Lubert Stryer. 2007, Biochemistry, sixth ed.
3) http://en.wikipedia.org/wiki/
4) http://100.naver.com
8. Further study
1) CMV/ T7/ Sp6 / SV40 promoter에 대하여 간단히 쓰시오.
→ CMV / T7 / Sp6 / SV
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실험에 미친 영향이 거의 없다고 할 수 있겠다.
3) 실제 실험을 수행함에 있어 solution을 잘못 사용하여 잘못된 실험결과를 얻었다고는 생각지 않는다. isopropanol을 넣고 centrifuge하였을 때 육안으로 확인 가능한 정도의 흰색 DNA를 얻었기 때문이
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= 11.36 g, = 2.4 g이 필요하다.(1 ℓ volume으로 계산)
2) RCF와 RPM의 relation equation에 대해 설명하시오.
→ 원심력에 의해 물체가 받는 가속도 g = rω² (ω = 각속도, r = 반지름)
ω = 2πf이므로
∴RCF = g = r * 4π²f²
RPM = 60*f
따라서 RCF = (r = 회전반경(단위 mm))
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여 있을 가능성과 resin에 binding하지 못하고 그냥 쓸려 내려온 Taq polymerase 두 가지 경우로 예측되며, 그 양이 생각보다 많았다(약 1 ㎍). 지난 주 실험에서도 F.T.의 양이 생각보다 많았었는데, 이는 purification이 덜 진행되었기 때문에 발생하는 unde
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되었다.
cuvette의 길이는 1cm이며, X의 molar extinction coefficient는 10,000 이다. 이 X의 농도는 얼마 인가?
-> Beer\'s law에 의해 A = εℓC에서 A = 0.4, ε= 10,000, ℓ = 1cm 이다.
∴ C = M
2) NADH는 340nm에서 최대흡광도를 나타내며 molar extinction coefficient는 5220 이
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실험재료
α-cyano-4-hydroxycinnamic acid, Deinonized water, Acetonitrile (ACN), 0.1 % trifluoroacetic acid (TFA) in deionized water, acetone, Matrix solution, 50 % acetonitrile (500㎕) + 0.1 % TFA(1 ㎕) buffer + DW 499 ㎕, Desalt solution, buffer A - 100 % ACN, B - 50 % ACN, C - 0 % ACN(D.W. 100%)
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실험적인 오차요인으로서 NaOH를 넣고 충분히 흔들지 않아서 더 적은 양으로 적정이 완료된 상태로 실험 이 끝났다는 경우도 생각할 수 있겠다.
3) 이론적으로 glycogen는 각 branch 당 7개의 glucose로 이루어져 있다. 하지만 포름산 적정으로 얻어낸
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실험자가 electrophoresis rate를 눈으로 확인할 수 있도록 도와준다. Dye가 gel의 끝까지 내려가면 걸어준 전압을 off시키면 실험을 효율적으로 수행할 수 있다.
6) Bradford assay의 결과 BSA를 이용하여 standard curve를 얻어냈다. BSA의 농도에 따라 정확한 li
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실험 결과를 보면 Nde I + Xho I의 band가 하나 밖에 나오지 않았다. 소량의 restriction enzyme이나 restriction buffer를 다룸에 있어 미숙하였기 때문인 것 같다. 발광 정도를 더 늘려서 확인하였을 때에야 더 size가 작아 밑에 위치하는 band를 확인할 수 있
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