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실험을 도와준 조교에게도 감사하고 많은 생각을 이끌어내 주신 조재용 교수님께도 감사를 드린다. 그리고 늦게까지 고생한 실험 조원들에게도 수고했다는 말을 전하고 싶다. Ⅰ. Growth / Specfic growth rate
Ⅱ. Transformation
Ⅲ. Plasmid prep
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DNA loading dye(6x)를 첨가한 후에, gel에 loading한다.)
※실험 방법 중 8번 과정과 D.W, Nde I , Nco I의 조성의 조금씩 변화를 주었다.
원심분리기 모든 조성이 첨가된 배지
우리가 사용한 loading dyeagarose 젤에 담는 과정
실험결과 및 고찰
생소한 용어들이
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정제하였다. 다음으로 분리한 절편을 BamHⅠ과 XbaⅠ으로 잘라 ligation을 위한 insert를 만들었고, 다시 한번 전기영동과 elution을 통해 크기를 확인하고, 회수하였다. 실험결과, 650 bp 의 band가 나타났으며, DNA 농도는 약 1 ng/μl 이 나왔다. 이것은 다
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실험, 김형석 외 2명(1996), 서울 : 동화기술, p78 ~ p89 (결과레포트)
1. Title
2. Abstract
(가) 실험목적
(나) 실험내용
⦁ 시약 & 재료
⦁ 기계 & 기구
⦁ Experimental Procedure
3. Theory
4. Result & Discussion
5. Conclusion
6. Ref
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실험에서 사용될 제한효소란 세균이 박테리오파지의 공격을 받으면 생산하는 효소로 이중 나선의
DNA의 특정한 염기서열을 인식해 그 부분의 절단에 있어 촉매작용을 하는 효소를 말한다. 대부
분의 제한효소는 인식자리(recognition site) 또는
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실험에서는 관찰되지 않았지만, Blue colony가 아닌, White colony가 발생할수 있는데, 이것은, MCS(multiple cloning site)가 Vector내의 PLASMID 뿐만 아니라, 염색체 내에 역시 존재하기 때문으로, ligated DNA가 Vector의 염색체로도 삽입이 되어, α-peptide가 생성되
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실험에서 사용한 calcium chloride method로서 차가운 CaCl2 처리를 통해 인위적으로 competent 상태를 유도하는 것이다. 이 방법은 5x106~2x107 transformed colony/supercoiled plasmid DNA μg의 효율을 나타내며, 이 방법으로 만들어진 c-cell은 -70℃에서 보관하여야 하
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DNA sequencing, 단백질 발현 등을 할 수 있다.원하는 유전자를 삽입하고 나면 Vector에 존재하는 염기서열을 이용하여 DNA sequencing을 하기편하고, vector에 달린 여러 부분을 이용하여 단백질 발현을 할 수도 있다.Vector의 종류에는 plasmid, bacteriophage, co
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실험에서는 Barbituric acid 생성물을 얻지 못하였으므로 재료비 계산을 할 수가 없었다.
5) 재물조사
파손 및 분실 기기명
갯수
금액(원)
파손 및 분실 경위
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6) 안전사고
사고자
상처 부위 및 크기
처치 결과
사고 경위
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7) 폐액 처
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plasmid DNA 2μl 섞는다.
13) 첫 번째 well을 띄우고 2번째부터 차례로 loading 한다.
14) 첫 번째 well 에 1Kb ladder 2 μl를 넣어준다.
15) 뚜껑을 덮고 전원을 켜 25분간 전기영동을 한다.
16) UV에서 band를 확인한다.
실험결과
실험 결과 두 개의 DNA가 분리 되
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