목차
ㆍ뷰렛반응(biuret reaction)
ㆍ분광법
ㆍ정량분석
ㆍ비색법(比色法)의 원리
ㆍ스펙트럼의 결정 조와 기능
ㆍ분광광도계의 구조와 기능
ㆍ완충용액(緩衝溶液, buffer solution)
ㆍfibrinolytic protease
ㆍ분광법
ㆍ정량분석
ㆍ비색법(比色法)의 원리
ㆍ스펙트럼의 결정 조와 기능
ㆍ분광광도계의 구조와 기능
ㆍ완충용액(緩衝溶液, buffer solution)
ㆍfibrinolytic protease
본문내용
는 7.5에서 8.0사이에 최대 활성을 보였으므로 neutral protease임을 알수있었다.
e. Human fibrinogen 분해
정제된 효소와 human fibrinogen을 함께 처리하여 반응시키면 반응시간에 따라 human fibrinogen의 B 와 r chain이 사라졌다.
f. 기질 특이성
Oxidized insulin B chain을 proteolytic cleavage를 위해 기질로 사용하였을 때, 전 체 10개의 peptide bond가 fibrinolytic protease에 의해 절단되었다.
그것들은 Asn(3)-Gln(4), Leu(6)-Cys(7), Leu(11)-Val(12), Val(12)-Glu(13), Leu(17)-Val(18), Val(18)-Cys(19), Gly(20)-Glu(21), Phe(24)-Phe(25), Phe(25)-Tyr(26). Thr(27)-Pro(28)이였다. 이 효소가 소수성이고 덩치가 큰 잔기들에 특이적으로 반 응함을 알 수 있었다.
2. fibrinolytic protease의 순수분리
a. Ammonium sulfate 분획
위에서 준비된 crude extract에 고체 ammonium sulfate를 최종농도가 80%가 되 도록 첨가한 후, 잘 녹여서 10.000 g에서 40분간 원심분리 하였다. 이로 인해 얻은 침전물을 모아 소량의 buffer A에 녹였다.
b. Gel 여과 크로마토그래피(G-50)
G-50 gel을 column(2 51 cm)에 충진하여 20nM Tris-Cl, pH 8.0으로 평형시켰 다. 위에 농축된 시료를 싣고 난 후, 같은 완충용액으로 용출 시켰다. 활성이 있는 분획을 모아 동결건조 하였다. 얻어진 시료를 증류수에 용해시켜 60 에 서 10분간 열처리를 하여 다시 10,000 g에서 20분간 원심분리를 행하였다. 얻 어진 상층액에 고체 ammonium sulfate를 첨가하여 1.7M 농도가 되도록 만들어 었다.
C. phenyl - sepharose 소수성 크로마토그래피
phenyl - sepharose gel을 column(2 7cm)에 충진하여 1.7M ammonium sulfate 가 포함된 10nM Tris- Cl, pH 8.0 buffer B완충용액으로 평형시켰다. Column을 Buffer A로 용출시켰다. 효소활성이 있는 분획을 모아 동결건조하였다.
d. Gel 여과 크로마토그래피 (G-150)
Sephadex G-150을 column(2.8 105 cm)에 충진하여 20nM Tris-Cl, pH 8.0으로 평형시켰다. 전 단계에서 얻어진 농축된 시료를 column에 싣고 같은 완충용액 으로 용출하였다. 용출속도는 10ml/hr이고 각 분획의 크기는 2ml이었다. 효소활 성이 있는 분획을 모아 동결건조 후, -20 에 보관하였다.
참고문헌
일반생물학실험, 강원대학교생물교재편찬위원회, 강원대출판부,1993, PP.158
현대과학대사전, 한국과학기술진흥출판부,한국과학기술진흥재단,1994,PP.625
생화학, 김태봉저, 탐구당, 1971, PP159-160
임상화학실기, 김종효외 10名, 고문사, 1989, PP. 197-207
생물과학을 위한 기기, M.H.Gordon.R.Macrae, 교보문고,1992, pp.133-143
생화학, 김 일 외2名, 청문각, 1985, PP. 14-15
동아원색세계대백과사전,동아출판사백과사전부,동아출판사,1989,PP.506,
브니태니커, 브니태니커사전부, 브니태니커, 1994, PP.230-232
Pleurotus에 있는 Proteases의 정제와 특성. 신현희. 울산대학교 대학원. 1997
e. Human fibrinogen 분해
정제된 효소와 human fibrinogen을 함께 처리하여 반응시키면 반응시간에 따라 human fibrinogen의 B 와 r chain이 사라졌다.
f. 기질 특이성
Oxidized insulin B chain을 proteolytic cleavage를 위해 기질로 사용하였을 때, 전 체 10개의 peptide bond가 fibrinolytic protease에 의해 절단되었다.
그것들은 Asn(3)-Gln(4), Leu(6)-Cys(7), Leu(11)-Val(12), Val(12)-Glu(13), Leu(17)-Val(18), Val(18)-Cys(19), Gly(20)-Glu(21), Phe(24)-Phe(25), Phe(25)-Tyr(26). Thr(27)-Pro(28)이였다. 이 효소가 소수성이고 덩치가 큰 잔기들에 특이적으로 반 응함을 알 수 있었다.
2. fibrinolytic protease의 순수분리
a. Ammonium sulfate 분획
위에서 준비된 crude extract에 고체 ammonium sulfate를 최종농도가 80%가 되 도록 첨가한 후, 잘 녹여서 10.000 g에서 40분간 원심분리 하였다. 이로 인해 얻은 침전물을 모아 소량의 buffer A에 녹였다.
b. Gel 여과 크로마토그래피(G-50)
G-50 gel을 column(2 51 cm)에 충진하여 20nM Tris-Cl, pH 8.0으로 평형시켰 다. 위에 농축된 시료를 싣고 난 후, 같은 완충용액으로 용출 시켰다. 활성이 있는 분획을 모아 동결건조 하였다. 얻어진 시료를 증류수에 용해시켜 60 에 서 10분간 열처리를 하여 다시 10,000 g에서 20분간 원심분리를 행하였다. 얻 어진 상층액에 고체 ammonium sulfate를 첨가하여 1.7M 농도가 되도록 만들어 었다.
C. phenyl - sepharose 소수성 크로마토그래피
phenyl - sepharose gel을 column(2 7cm)에 충진하여 1.7M ammonium sulfate 가 포함된 10nM Tris- Cl, pH 8.0 buffer B완충용액으로 평형시켰다. Column을 Buffer A로 용출시켰다. 효소활성이 있는 분획을 모아 동결건조하였다.
d. Gel 여과 크로마토그래피 (G-150)
Sephadex G-150을 column(2.8 105 cm)에 충진하여 20nM Tris-Cl, pH 8.0으로 평형시켰다. 전 단계에서 얻어진 농축된 시료를 column에 싣고 같은 완충용액 으로 용출하였다. 용출속도는 10ml/hr이고 각 분획의 크기는 2ml이었다. 효소활 성이 있는 분획을 모아 동결건조 후, -20 에 보관하였다.
참고문헌
일반생물학실험, 강원대학교생물교재편찬위원회, 강원대출판부,1993, PP.158
현대과학대사전, 한국과학기술진흥출판부,한국과학기술진흥재단,1994,PP.625
생화학, 김태봉저, 탐구당, 1971, PP159-160
임상화학실기, 김종효외 10名, 고문사, 1989, PP. 197-207
생물과학을 위한 기기, M.H.Gordon.R.Macrae, 교보문고,1992, pp.133-143
생화학, 김 일 외2名, 청문각, 1985, PP. 14-15
동아원색세계대백과사전,동아출판사백과사전부,동아출판사,1989,PP.506,
브니태니커, 브니태니커사전부, 브니태니커, 1994, PP.230-232
Pleurotus에 있는 Proteases의 정제와 특성. 신현희. 울산대학교 대학원. 1997
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