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PCR의 결과로 증폭된 Target DNA의 전기영동 결과는 다음과 같다.
Fig 13. 전기영동 결과
이번 실험에서 모든 조의 전기영동 결과가 대체로 희미하게 나왔고, 1조와 4조와 6조가 조금 모양이 보이며 그 중 1조가 가장 잘 보이는 상태이다. 희미한 부
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실험군의 농도 차이인데, 대조군의 흡광도는 시간별로 측정할 때마다 샘플을 따서 영점을 수정하는 데에 사용하였으므로 와 같다고 볼 수 있다. 따라서 이 값에 따른 pNPB 용액의 농도를 계산해보자. 이 과정 역시 영점 설정의 오류가 있는 10min
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실험에서는 호기성 균 및 세포의 배양을 위해 사용한다.
⑤ 250ml laboratory bottle
(= Duran bottle )
⑥ Aluminium foil
Fig 17. Duran bottle
- 시약 및 샘플 보관에 사용하며, 변성이 되지 않는 실험용 유리용기이다.
Fig 18. Aluminium foil
- 포장재나 단열재로 쓰
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실험결과를 모두 종합해보았을 때 WY-14643은 먼저 PPRE promoter를 함유한 cell에서 luciferase를 발현시켜 빛을 낸 것으로 보아 WY-14643은 transcription factor로서 작용한다는 것을 알 수 있다. 또한 Real time PCR 실험결과에서 CPT1a와 PPARa의 mRNA의 발현량이 cont
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. 서로 다르게 증폭된 PCR 산물을 선택하여 이와 같이 증폭된 DNA가 특정 세포에서 특징적으로 발현되는 유전자인지를 보는 것으로 subtractive hybridization보다 훨씬 간단한 것이 장점이지만, 실험의 민감도와 특이도가 낮은 것이 단점이다.
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PCR product는 정방향과 역방향 두 방향으로 모두 삽입될 수 있다. 그런데 hindIII와 같은 제한효소를 처리하게 되면 어느 방향으로 ligation이 되었는지에 따라 잘리는 양상이 다르다.... 1. 실험일자
2. 실험목적
3. 서론
(1) PCR
(2) DNA 클로닝
(3)
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http://www.takara.co.kr/pcr_down/PCR_16.PDF 1. 실험 제목
2. 실험 날짜
3. 실험 조원
4. 실험 준비물
5. 서론
1) 실험 목표
2) PCR(Polymerase Chain Reaction)
6. 실험 방법
7. 결과 및 관찰
8. 고찰
9. 참고문헌
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late DNA를 다룰 때 실 수가 있었기 때문에 실험 결과가 제대로 나오지 않은 것으로 생각된다.
어떻게 보면 전기영동과 PCR은 정말 기본적인 실험이고 많이 하는 실험 중 하나 였을 수도 있는데, 실패했다는 것이 너무 아쉽다. 그리고 의학유전학
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실험의 경우 예를 들면 전단백질 정보영역 염기서열을 증폭하는 것처럼 PCR 산물의 위치는 실험의 목적에 따라 결정된다. 그러나 PCR을 이용해서 특이적인 유전자의 발현을 조사할 경우에는 PCR 산물의 위치에 관한 한정이 적어 primer의 설계에
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PCR은 매우 민감하다.
3. 실험기구 & 시약
① TE(tris EDTA) buffer
<↑EDTA>
DNA의 경우 pH8.0 / RNA의 경우 pH7.5 / DNA+RNA 경우 pH8.0
pH 8.0 : 100mM tris-cl (pH8.0) + 10mM EDTA(pH8.0)
Tris-cl(pH8.0) : trizabase 를 증류수에 넣고 pH8.0까지 HCl로 조절한다.
② DNA sample
③ Spectro
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