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(OH)₂→BaCO₃ + 2NaOH
4) 침전을 제외한 상등액을 시약병에 옮기고 라벨을 부착한다
≪ 사 진 ≫ 1. 실험제목
2. 실험목적
3. 실험이론 및 방법
3. 실험기구 및 시약
4. 실험과정
5. 실험 결과 및 고찰
▶ 고찰
6. 참고문헌
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실험군의 농도 차이인데, 대조군의 흡광도는 시간별로 측정할 때마다 샘플을 따서 영점을 수정하는 데에 사용하였으므로 와 같다고 볼 수 있다. 따라서 이 값에 따른 pNPB 용액의 농도를 계산해보자. 이 과정 역시 영점 설정의 오류가 있는 10min
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액이다.
Fig 12. 제한효소의 기능
- 제한효소는 DNA의 특정한 염기의 배열을 식별하고, 이중 사슬을 절단하는 효소로, 이번 실험에서는 EcoR Ⅰ, Nde Ⅰ, Xho Ⅰ의 3가지 제한효소를 사용한다.
⑦ Electrophoresis apparatus (전기영동장치)
⑧ Electrophoresis aga
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Lehninger Principles of Biochemistry (6th edition) W. H. Freeman. (2012)
- [네이버 지식백과] DNA [deoxyribonucleic acid] (미생물학백과)
DNA의 복제 , 중합효소 연쇄반응 (PCR) (생화학백과) 1. 실험 목적
2. 바탕 이론
3. 기구 및 시약
4. 실험 방법
5. 참고 문헌
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액끼리 헷갈리지 않도록 유의하고, 피펫 팁은 용액을 바꿀 때마다 새로 끼워주어야 한다.
4. 실험 방법
(1) 미리 배양한 세포 1.0 ml을 1.5 ml micro tube에 넣는다.
(2) 15,000 rpm으로 10분 원심분리 한 뒤 상등액을 버린다. 이 때, 무게가 대칭되도록 해
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액 등은 멸균해 핵산 분해효소를 불활성 시켜둬야 한다.
3. Result
PCR의 결과로 증폭된 Target DNA의 전기영동 결과는 다음과 같다.
Fig 13. 전기영동 결과
이번 실험에서 모든 조의 전기영동 결과가 대체로 희미하게 나왔고, 1조와 4조와 6조가 조금
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액과 섞은 뒤 두 번째 홈에 loading한다.
(16) 100 V의 전압에서 1시간동안 전기영동을 진행한다.
(17) Agarose gel을 꺼내 UV transilluminator위에 놓고 자외선을 쬐어 Plasmid DNA의 크기를 확인 한다.
※ 실험 시 유의사항
- 원심분리시킬 때 micro tube 끼리의
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실험 과정에서 스타활성이 생기는 원인은 크게 두가지가 있다. 첫 번째는 마이크로 피펫을 이용해 반응 용액을 제조할 때 DNA를 넣어준 다음 제한효소를 넣어야 하는데, 제한효소를 DNA 보다 먼저 넣어버리면 효소의 농도 > DNA의 농도가 되어
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실험을 통해 이론값에 대한 검증을 할 수가 있어서 좋았다.
참고 문헌
1 한국화학공학회 교육연구위원회, 화학공학실험, 형설출판사
2 실험자료유인물, 액상화학반응편
3 이태희외, 화공유체역학, 선중당, 2판, p181-199 (1994)
4 반응공학, Levenspel
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CHEMISTRY LAB, 이학일, 노승백, 최중재, 계명대학교 출판부, p.31~35
Physical Chemistry, P.W Atkins, 온도와 밀도 관계, 실험 데이터 보정에 대한 설명
Chemistry: The Central Science, Brown, LeMay, Bursten, 시료의 수분 제거 및 건조 과정의 필요성 1.관찰
2.결과
3.
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